Termitomyces robustus (Beeli) Heim
Bull. Jard. Bot. État, Brux. 21: 210 (1951)
Synonymes:
Schulzeria robusta Beeli, Bull. Soc. Roy. Bot. Belg. 60: 75 (1927); Termitomyces robustus var. robustus (Beeli) Heim, Bull. Jard. Bot. Etat, Brux. 21: 210 (1951).
Références illustrées / Illustrations: Beeli (1927b), Bull. Soc. Roy. Bot. Belg. 60: 75, pl. 1, fig. 2 (ut Schulzeria robusta); Buyck (1994a), Ubwoba: 41, figs 18, 19; De Kesel et al. (2002), Guide champ. com. Bénin: 229, photo 66; De Kesel et al. (2024), Champ. comestibles d'Afrique de l'Ouest, ABC Taxa 24: 224, figs 118 & 119; Eyi Ndong et al. (2011), Champignons comestibles des forêts denses d’Afrique centrale, ABCTaxa 10: 212, fig.145; Heim (1951), Bull. Jard. Bot. Etat Brux. 21: 210, figs 44-46, pl. 5, fig. A; Heim (1952), Mém. Soc. Helv. Sc. Nat. 80: 13, fig. 5, pl. 4, pl. 7, fig. d, pl. 9, fig. b; Heim (1958), Fl. Icon. Champ. Congo 7: 147, pl. 24, figs 1, 3; Heim (1963d), Sciences 26: 32, fig. 21a; Heim (1977), Termites et champ: 79, figs 22, 23, pl. 3, fig. 2c, d; Niemelä et al. (2021), Larger Fungi of eastern tropical Africa, a field guide, Norrlinia 36: 163, fig. a; Rammeloo & Walleyn (1993), Scripta Bot. Belg. 5: 51, fig. 5b; Zoberi (1972), Tropical macrofungi: 88, fig. 21; Zoberi (1973), Niger. Field 38: 82, pl. 1c.
Macroscopie – Chapeau 8-11(-20) cm diam., ferme, charnu, conique puis plano-convexe à plan, à perforatorium faiblement démarqué, aigu, large de 1-1.5 cm; marge d’abord incurvée puis révolutée, souvent finement striée, finalement à déchirures radiales -2 cm; revêtement entièrement séparable, légèrement visqueux et luisant par temps humide, sinon sec, subsoyeux, mat, radialement sillonné, muni de multiple bourrelets et sillons concentriques vers la marge, de brun foncé à brun clair [6C-E4, 5C4-5], progressivement plus clair vers la marge, perforatorium brun noirâtre [6F5] plus foncé que le chapeau. Pied 10-23 x 1.5-3 cm, central, massif, cylindrique, lisse, crème à brun ocracé pâle, s’épaississant graduellement pour atteindre 3 cm au collet, se prolongeant ensuite en longue pseudorhize cylindrique (-40 cm), brun foncé en haut, graduellement blanche vers l’extrémité. Hyménophore à lamelles libres, serrées, -1 cm de large, inégales, blanchâtres à crème incarnat; lamellules nombreuses, de longueur variable; arête irrégulière, érodée, concolore. Chair peu épaisse et molle dans le chapeau, fibreuse et ferme dans le pied, blanche, immuable. Odeur fongique agréable. Goût fort, de noisette. Sporée crème incarnat.
Microscopie – Spores subglobuleuses à ellipsoïdes, hyalines, lisses, (6.4-)6.4-7.6-8.8(-8.7) x (3.8-)3.9-4.5-5.2(-5.4) μm, Q = (1.47-)1.45-1.67-1.89(-2.02). Basides clavées, 4-spores, 13.5-24 x 4.7-8.7 μm. Cheilocystides très abondantes, clavées, septées à petites cellules basales. Pleurocystides très abondantes, largement clavées. Anses d’anastomose absentes.
Ecologie – Symbiotique, obligatoirement associé aux termites, sur termitière hypogée; forêt dense humide, forêt de montagne, forêt claire, savane, plantation.
Note – Cette espèce est souvent confondue avec Termitomyces fuliginosus (Pegler, 1977) mais s’en distingue par son revêtement piléique bosselé, veiné et sillonné et par l’absence de disque basal à l’extrémité de sa pseudorhize. Elle diffère de Termitomyces mammiformis par son perforatorium lisse en continuité avec le profil du chapeau.
Macroscopiquement, elle ressemble à Termitomyces eurrhizus, une espèce génétiquement proche de T. striatus (Frøslev et al., 2003) Termitomyces eurhizus est plus commun en Afrique de l’Est (Paloi et al., 2023), surtout en altitude (Niemelä et al., 2021) et se distingue de T. robustus par son perforatorium plus pointu, la quasi absence de bourrelets et de sillons concentriques sur le chapeau et ses spores un peu plus grandes (7-)7,5-8,31-9,2(-9,6) × (4,1-4,85-5,2(-5,5) µm, Q = 1,72.
Macroscopy – Cap 8-11(-20) cm diam., firm, fleshy, conical then plano-convex to plane, with weakly demarcated perforatorium, acute, 1-1.5 cm wide; margin first incurved then revolute, often finely striated, finally with radial tears -2 cm; pileipellis fully separable, slightly viscous and glossy when wet, if not, dry, subsilky, dull, radially furrowed, with multiple concentric ridges and grooves towards margin, dark brown to light brown [6C-E4, 5C4-5], gradually lighter towards margin, perforatorium blackish-brown [6F5] darker than cap. Stipe 10-23 x 1.5-3 cm, central, massive, cylindrical, smooth, cream to pale ochre-brown, gradually thickening to 3 cm at collar, then extending into a long cylindrical pseudorhiza (-40 cm), dark brown at top, gradually white towards tip. Hymenophore with lamellae free, tight, -1 cm wide, uneven, whitish to cream; lamellulae numerous, varying length; edge irregular, eroded, concolorous. Flesh thin and soft in cap, fibrous and firm in stipe, white, unchanging. Odour pleasant, fungal. Taste strong, hazelnut. Spore print creamy flesh.
Microscopy – Spores subglobose to ellipsoid, hyaline, smooth, (6.4-)6.4-7.6-8.8(-8.7) x (3.8-)3.9-4.5-5.2(-5.4) μm, Q = (1.47-)1.45-1.67-1.89(-2.02). Basidia clavate, 4-spores, 13.5-24 x 4.7-8.7 μm. Cheilocystidia very abundant, clavate, septate with small basal cells. Pleurocystidia very abundant, widely clavate. Clamp connections absent.
Ecology – Symbiotic, associated with termites, on hypogeous termite mound; dense moist forest, mountain forest, open forest, savanna, plantation.
Note – This species is often confused with Termitomyces fuliginosus (Pegler, 1977) but is distinguished by its bumpy, venate and furrowed pileipellis and the absence of a basal disc at the end of its pseudorhiza. It differs from Termitomyces mammiformis by its smooth perforatorium in continuity with the cap profile.
Macroscopically, it resembles Termitomyces eurrhizus, a species genetically close to T. striatus (Frøslev et al., 2003). Termitomyces eurhizus is more common in East Africa (Paloi et al., 2023), especially at altitude (Niemelä et al, 2021) and is distinguished from T. robustus by its more pointed perforatorium, the virtual absence of concentric ridges and furrows on the cap and its slightly larger spores (7-)7.5-8.31-9.2(-9.6) × (4.1-4.85-5.2(-5.5) µm, Q = 1.72.
Distribution connue / Known distribution – Bénin (De Kesel et al., 2002; Boa, 2004; Yorou & De Kesel, 2011; Osemwegie et al., 2014; Yorou et al., 2014; De Kesel et al., 2024), Burundi (Buyck, 1994a; Degreef et al., 2016), Cameroun (Berthet & Boidin, 1966), R. Centrafricaine (Heim, 1963), R. Congo (Heim, 1951, 1952, 1977), R.D. Congo (Beeli, 1927, ut Schulzeria robusta; De Kesel & Malaisse, 2010; Heim, 1951, 1958, 1977; Malaisse, 1997), Côte d'Ivoire (Osemwegie et al., 2014; De Kesel et al., 2024), Gabon (Eyi Ndong, 2009; Eyi Ndong & Degreef, 2010; Eyi Ndong et al.; 2011), Ghana (Apetorgbor et al., 2006; Osemwegie et al., 2014; De Kesel et al., 2024), Guinée (Zoberi 1972; Turnbull & Watling 1999; De Kesel et al., 2024), Malawi (Morris, 1990), Nigeria (Alasoadura, 1967; Zoberi, 1972, 1973, 1979; Oso, 1975, 1977; Ogundana, 1979; Ogundana & Fagade, 1982; Adewusi et al., 1993; Rammeloo & Walleyn, 1993; Walleyn & Rammeloo, 1994; Fasidi & Kadiri, 1995; Akpaja et al., 2003; Adekunle & Ajao, 2005; Okhuoya et al., 2010; Osemwegie et al., 2010, 2014; Ayodele et al., 2011; Oyetayo, 2011; De Kesel et al., 2024), Ouganda (Pegler, 1969, 1977; Zoberi, 1972), Sénégal (Osemwegie et al., 2014; De Kesel et al., 2024), Sierra Leone (Zoberi, 1972; De Kesel et al., 2024), Tanzanie (Niemelä et al., 2021), Togo (Yorou et al., 2014; Kamou et al., 2017; De Kesel et al., 2024).
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